產(chǎn)品中心
產(chǎn)品詳情
  • 產(chǎn)品名稱:通用型基因組DNA提取試劑盒

  • 產(chǎn)品型號(hào): 200T
  • 產(chǎn)品廠商:通蔚生物
  • 產(chǎn)品價(jià)格:1495
  • 產(chǎn)品庫存:107
  • 產(chǎn)品文檔:
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簡單介紹:
通用型基因組DNA提取試劑盒本試劑盒適合于從新鮮或冷凍的動(dòng)物組織,細(xì)胞,血液,細(xì)-菌等多種樣品中提取高純度總 DNA。本品可純化獲得分子量大為 50kb 的 DNA 片段,純化過程不需要使用苯酚或氯仿等有毒溶劑,無需乙醇沉淀。本試劑盒采用優(yōu)化的緩沖體系使裂解液中的DNA高效特異的結(jié)合到硅基質(zhì)離心吸附柱上,PCR 和其他酶促反應(yīng)的抑制劑可通過兩步洗滌步驟被有效去除,使用低鹽緩沖液或水洗脫,即可得到高純度DNA。純化得到的DNA可以直接用于酶切,PCR,Real-Time PCR,文庫構(gòu)建,Southern Blot,
詳情介紹:
產(chǎn)品特點(diǎn)
試劑盒適合于從新鮮或冷凍的動(dòng)物組織,細(xì)胞,血液,細(xì)-菌等多種樣品中提取高純度總 DNA。本品可純化獲得分子量大為 50kb 的 DNA 片段,純化過程不需要使用苯酚或氯仿等有毒溶劑,無需乙醇沉淀。本試劑盒采用優(yōu)化的緩沖體系使裂解液中的DNA高效特異的結(jié)合到硅基質(zhì)離心吸附柱上,PCR 和其他酶促反應(yīng)的抑制劑可通過兩步洗滌步驟被有效去除,使用低鹽緩沖液或水洗脫,即可得到高純度DNA。純化得到的DNA可以直接用于酶切,PCR,Real-Time PCR,文庫構(gòu)建,Southern Blot,

它具有下列特點(diǎn):
1. 簡便快速:1 小時(shí)內(nèi)可獲得高純度的基因組 DNA;
2. 質(zhì)量好:可直接進(jìn)行 PCR、酶切和雜交等分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)。

成分規(guī)格

Buffer GTL

12ml

25ml

50ml

Buffer GL

12ml

25ml

50ml

Buffer EB

10ml

10ml

30ml

Buffer W1(concentrate)

13ml

26ml

52ml

Buffer W2(concentrate)

15ml

30ml

60ml

Proteinase K

1ml

2×1ml

4×1ml

Spin Columnwith Collection Tubes

50套

100套

200套

蛋白酶K 于-20℃, 其他組分室溫(15 - 25℃) , 可保存 12 個(gè)月

本產(chǎn)品僅供科研使用,不得用于其它用途


使用方法
自備試劑
無水乙醇
Enzymatic Lysis Buffer(提取革蘭氏陽性菌基因組DNA時(shí)須準(zhǔn)備)。EnzymaticLysisBuffer 配方:20 mM Tris,pH 8.0;2 mM Na2-EDTA;1.2%Triton X-100;終濃度為20mg/ml的 Lysozyme(溶菌酶)。

一、血液及細(xì)胞樣本基因組提取
1. 材料處理
1) 如果提取材料為哺乳動(dòng)物抗凝血液(無核紅細(xì)胞),可直接向50-200μl 新鮮或冷凍的抗凝血液樣品中加入 Buffer GTL 補(bǔ)足至 200μl。
2) 如果提取材料為禽類,鳥類,兩棲類或更低級(jí)生物的抗凝血液,其紅細(xì)胞為有核細(xì)胞,取 5-10μl 新鮮或冷凍的抗凝血液樣品,加入Buffer GTL 補(bǔ)足至200μl。
3) 貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞應(yīng)先處理為細(xì)胞懸液(提取量為5x106 個(gè)細(xì)胞),2000rpm(400g)離心 5min,棄盡上清,加 200μl GTL,振蕩至樣品徹底懸浮。
注 意:如需去除 RNA,可在上述步驟完成后,加入 4μl 濃度為 100mg/ml 的RNase A溶液,渦旋15 秒,室溫放置 2min。)
2. 加入 20μl Proteinase K 溶液,混勻。
3. 加入 200μl Buffer GL,渦旋振蕩充分混勻,56?C 水浴 10min。
4. 短暫離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。加入200μl 無水乙醇,渦旋振蕩充分混勻,短暫離心。
注 意:加入 Buffer GL 和無水乙醇后要立即渦旋震蕩混勻。加入 Buffer GL 和無水乙醇后可能會(huì)產(chǎn)生白色沉淀,不會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。一些組織在加入 Buffer GL 和無水乙醇后可能形成溶膠狀產(chǎn)物,此時(shí)推薦進(jìn)行劇烈震蕩或渦旋處理。)
5. 上一個(gè)步驟中所得溶液全部加入到已裝入收集管的吸附柱(Spin Columns DM)中,若一次不能加完溶液,可分多次轉(zhuǎn)入。12,000 rpm(約 13,400g)離心1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
6. 向吸附柱中加入 500μl Buffer W1(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12,000rpm離心 1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
7. 向吸附柱中加入 500μl Buffer W2(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12,000rpm離心 1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
注 意:如需進(jìn)一步提高 DNA 純度,可重復(fù)步驟 7。)
8. 12,000 rpm 離心 2min,倒掉收集管中廢液。將吸附柱置于室溫?cái)?shù)分鐘,以徹底晾干。(注 意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除,乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶切、PCR等酶促反應(yīng))。
9. 將吸附柱置于一個(gè)新的離心管(自備)中,向吸附柱的中間部位懸空加入50-200μlBuffer EB 或滅-菌水,室溫放置 2-5min,12000rpm離心1min,收集DNA溶液,-20℃保存 DNA。
注 意:為增加洗脫效率,可將洗脫液 Buffer EB 在 60℃預(yù)熱。如需使用去離子水洗脫,可用NaOH調(diào)整其pH值在7.0 - 8.5之間,為了增加回收率,可將得到的溶液重新加入到吸附柱中,室溫放置2min,再次離心收集)

二、動(dòng)物組織基因組提取
1. 材料處理如果提取材料為動(dòng)物組織,取 25 mg(脾組織用量應(yīng)少于10 mg);如果材料為鼠尾,取一段長度為 0.4-0.6 cm 的大鼠鼠尾或兩段長度為 0.4-0.6 cm 的小鼠鼠尾。樣本進(jìn)行液氮研磨或切成小塊后置于 1.5 ml 離心管中,加入 180μl Buffer GTL,將不同樣品做好標(biāo)記。若使用勻漿器處理樣本,勻漿前向樣本中加入不超過 80μl Buffer GTL,勻漿后加入100μlBuffer GTL。
注 意:
1)確保各組織的量不要超出推薦范圍。
2)組織樣本在加入 Buffer GTL 之前用液氮研磨或加入 Buffer GTL 用勻漿器勻漿處理,可以增加裂解效率。)
2. 加入 20μl Proteinase K,渦旋震蕩使樣品徹底混勻。56℃水浴,直至組織完全裂解,孵育過程中可每隔一段時(shí)間顛倒或震蕩離心管使樣品分散。
注 意:
1)不同組織消化時(shí)間不同,通常 1-3 小時(shí)即可完成,鼠尾需要消化6-8 小時(shí),必要時(shí)過夜消化,不會(huì)影響后續(xù)操作。
2)如果孵育和渦旋震蕩后仍然有膠狀物質(zhì),延長56?C 孵育時(shí)間或再加入20μl Proteinase K 消化。
3)如需去除 RNA,可在上述步驟完成后,加入4μl 的濃度為100mg/ml 的RNase A 溶液,渦旋 15 秒,室溫放置 5-10min。)
3. 加入 200μl Buffer GL,渦旋震蕩充分混勻,70?C 水浴 10min。短暫離心后加入200μl無水乙醇,渦旋震蕩充分混勻。
注 意:
1)加入 Buffer GL 和無水乙醇后要立即渦旋震蕩混勻。
2)加入 Buffer GL 和無水乙醇后可能會(huì)產(chǎn)生白色沉淀,不會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。一些組織(如脾,肺)在加入 Buffer GL 和無水乙醇后可能形成溶膠狀產(chǎn)物,此時(shí)推薦進(jìn)行劇烈震蕩或渦旋處理。)
4. 短暫離心,將步驟 3 所得溶液全部加入到已裝入收集管的吸附柱(Spin Columns DM)中,若一次不能加完溶液,可分多次轉(zhuǎn)入。12,000 rpm(約13,400g)離心1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
5. 向吸附柱中加入 500μl Buffer W1(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12,000rpm離心 1 min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
6. 向吸附柱中加入 500μl Buffer W2(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12,000rpm。離心 1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
注 意:如需進(jìn)一步提高 DNA 純度,可重復(fù)步驟) 
7. 12,000 rpm 離心 2min,倒掉收集管中廢液。將吸附柱置于室溫?cái)?shù)分鐘,以徹底晾干。(注 意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除,乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶切,PCR等酶促反應(yīng))。
8. 將吸附柱置于一個(gè)新的離心管(自備)中,向吸附柱的中間部位懸空加入50-200μlBuffer EB 或滅-菌水,室溫放置 2-5min,12,000 rpm離心1min,收集DNA溶液,-20℃保存 DNA。
注 意:為增加洗脫效率,可將洗脫液 Buffer EB 在 60℃預(yù)熱。如需使用去離子水洗脫,可用NaOH調(diào)整其pH值在7.0 - 8.5之間,為了增加回收率,可將得到的溶液重新加入到吸附柱中,室溫放置2min,再次離心收集)

三、細(xì)-菌基因組提取
1. 細(xì)-菌樣本預(yù)處理取 1 - 3 ml 過夜培養(yǎng)的菌液,室溫 10,000 rpm 離心 1 min,棄上清。(注 意:根據(jù)菌液的濃度決定取液量,當(dāng) OD600=1 時(shí),1ml 菌液濃度為 109 個(gè)細(xì)胞,菌液的量不要超過 109 個(gè)細(xì)胞,太多會(huì)使離心柱的膜堵塞,提取的基因組 DNA 的量減少,純度降低)
2. 加入 200μl Buffer GTL,用槍頭充分吹打或用渦旋振蕩器充分懸浮。
注 意:對(duì)于較難破壁的革蘭氏陽性菌,可略過第 2 步驟,加入溶菌酶進(jìn)行破壁處理,具體方法為:加入 180 μl 終濃度為 20 mg/ml 的溶菌酶緩沖液(20 mM Tris, pH 8.0;2 mM Na2-EDTA;1.2%TritonX-100;溶菌酶必須用溶菌酶干粉溶解在緩沖液中進(jìn)行配制,否則會(huì)導(dǎo)致溶菌酶無活性),37 ℃處理30 min 以上。如要去除 RNA,可加入濃度為 100 mg/ml 的 RNase A 4μl,室溫處理5 min)
3. 加入 20μl Proteinase K 溶液,充分混勻。
4. 加入 200μl Buffer GL,充分混勻,56℃水浴 10 min,孵育過程中每隔一段時(shí)間顛倒或震蕩離心管使樣本分散均勻。溶液變得清亮后短暫離心,以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。(注意:Buffer GL 加入時(shí)可能會(huì)產(chǎn)生白色沉淀,一般 56℃時(shí)會(huì)消失,不影響后續(xù)實(shí)驗(yàn),如溶液未變清亮,說明細(xì)胞裂解不徹底,可能導(dǎo)致提取的 DNA 量少或者提取的 DNA 不純
5. 加入 200μl 無水乙醇,充分震蕩,此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀,短暫離心以去除管蓋內(nèi)壁水珠。
6. 將一個(gè)離心吸附柱放入收集管中,將上一步所得溶液和絮狀沉淀轉(zhuǎn)移到吸附柱中,12,000 rpm 離心 1 min,棄收集管中的濾液。
7. 向吸附柱中加入 500μl Buffer W1(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12,000rpm離心 1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
8. 向吸附柱中加入 500μl Buffer W2(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12,000rpm。離心 1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。(注意:如需進(jìn)一步提高 DNA 純度,可重復(fù)步驟 6。)
9. 12,000 rpm 離心 2min,倒掉收集管中廢液。將吸附柱置于室溫?cái)?shù)分鐘,以徹底晾干。(注 意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除,乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶切、PCR等酶促反應(yīng))。
10. 將離心吸附柱置于一個(gè)新的 1.5 ml 塑料離心管(自備)中,加入50 - 100μl Buffer GE,室溫放置 2 min,12,000 rpm 離心 1 min,離心管底溶液即基因組DNA。
注 意:為增加洗脫效率,可將洗脫液 Buffer EB 在 60℃預(yù)熱。如需使用去離子水洗脫,可用NaOH 調(diào)整其pH值在7.0 - 8.5 之間,為了增加回收率,可將得到的溶液重新加入到吸附柱中,室溫放置 2 min,再次離心收集)

注意事項(xiàng)
1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 產(chǎn)生沉淀,可在 56℃水浴溶解。
2. 樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融,否則會(huì)導(dǎo)致提取的 DNA 片段小,提取量下降。
3. 所有離心步驟均為臺(tái)式離心機(jī),室溫下操作。
4. 按要求在 Buffer W1 和 Buffer W2 中加入無水乙醇。
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